Equipamientos
- Confocal multiespectral Leica TCS SP8 con un módulo de alta velocidad y un módulo STED 3X para superresolución. Líneas de láser: 405 nm, 488 nm y láser blanco por excitación de 470-670nm. Líneas de depleción: 592, 660 nm y 775 nm. Dos detectores híbridos.
- Microscopio Leica DM5500B y camera digital de color DFC7000T para la detección de imágenes de luz transmitida, luz polarizada y de fluorescencia.
- Estaciones de trabajo para el procesamiento y análisis de imágenes confocales (LAS X, Fiji / ImageJ, Huygens).
- Equipo auxiliar: incubadora implementada en el microscopio con control de temperatura y CO2, centrífuga, camera de flujo laminar, congelador e incubadoras de CO2.
Aplicaciones
Técnicas de microscopia:
- Imagen multicanal confocal y de luz transmitida de células vivas o muestras fijadas.
- Análisis tridimensional y mapas de relieve.
- Experimentos multidimensionales in vivo: tracking, calcio intracelular, potenciales de membrana, otros.
- Confocal de alta velocidad.
- Estudios de colocación de proteínas.
- Estudios cuantitativos de fluorescencia y cálculo de distintos parámetros.
- Técnicas F: FRET, FRAP, fotoactivación.
- Análisis del espectro de sustancias fluorescentes.
- Microscopia por experimentos multiposición y realización de mosaicos.
- Microscopia óptica de luz transmitida: BF, DIC y luz polarizada.
- Microscopia convencional de fluorescencia.
- Tratamiento de imágenes y cuantificación con programas especializados: LAS X, ImageJ, Fiji.
- Estudios de superresolución: HyVolution, STED.
Preparación de muestras:
- Preparación de muestras para microscopia óptica y fluorescencia de distintos tipos de materiales (biológicos y no biológicos).
- Fijaciones químicas y corte de material biológico.
- Inmunofluorescencia en células y tejidos.
- Metodologías para el análisis in vivo de células y estudios fisiológicos: fluorocromos específicos, marcaje de iones (calcio), lectinas y proteínas fluorescentes.